Cor Vasa 2019, 61(3):e294-e298 | DOI: 10.33678/cor.2019.027

Energetický metabolismus endotelové buňky

Adéla Prokopcová
Kardiologická klinika, 2. lékařská fakulta Univerzity Karlovy a Fakultní nemocnice v Motole, Praha

Endotelové buňky tvoří aktivní výstelku cévního systému, jsou metabolicky velmi aktivní a mají vysoké energetické požadavky. Hlavním zdrojem energie je glukóza spotřebovávaná anaerobní glykolýzou. Ostatní zdroje jsou využívány k tvorbě metabolických intermediátů potřebných v klidovém stavu k udržení buněčné struktury a k signalizaci, v aktivovaném stavu k cévní proliferaci. V klidovém stavu nejsou endotelové buňky příliš citlivé k hypoxii. Pokud jsou však endotelie současně vystaveny nedostatku glukózy a dodávka energetických substrátů a kyslíku není včas obnovena, dochází po čase k energetickému kolapsu a nekróze buňky.

Klíčová slova: Aerobní glykolýza, Endotelová buňka, Metabolismus

Vloženo: 8. duben 2019; Přijato: 28. květen 2019; Zveřejněno: 21. červen 2019  Zobrazit citaci

ACS AIP APA ASA Harvard Chicago Chicago Notes IEEE ISO690 MLA NLM Turabian Vancouver
Prokopcová A. Energetický metabolismus endotelové buňky. Cor Vasa. 2019;61(3):e294-298. doi: 10.33678/cor.2019.027.
Sdílet...
Stáhnout citaci
  • BibTeX (.bib)
  • Bookends (.ris)
  • EasyBib (.ris)
  • EndNote (.enw)
  • EndNote 8 (.xml)
  • ISI WoS (.isi)
  • Medlars (.medlars)
  • Mendeley (.ris)
  • MODS (.xml)
  • Papers (.ris)
  • RefWorks (.txt)
  • RefManager (.ris)
  • RIS (.ris)
  • MS Word (.xml)
  • Zotero (.ris)
    • Zobrazit celý článek

    Reference

    1. Theodorou K, Boon RA. Endothelial Cell Metabolism in Atherosclerosis. Front Cell Dev Biol 2018; https://doi.org/10.3389/fcell.2018.00082 Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    2. Eelen G, de Zeeuw P, Treos P, et al. Endothelial Cell Metabolism. Physiol Rev 2018;98:3-58. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    3. von Recklinghausen F. Eine Method, mikroskopische Höhle und solide Gebilde voneinander zu untersheiden. Virchow Arch 1860;19:451. Přejít k původnímu zdroji...
    4. Sumpio BE, Riley JT, Dardik A. Molecules in focus; Cells in focus: endothelial cell. Int J Biochem Cell Biol 2002;34:1508-1512. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    5. Cines DB, Pollak ES, Buck CA, et al. Endothelial Cells in Physiology and in the Pathophysiology of Vascular Disorders. Blood 1998;91:3527-3561.
    6. Arciniegas E, Ponce L, Hartt Y, et al. Intimal Thickening InvolvesTransdifferentiation of Embryonic Endothelial Cells. Anat Rec 2000;258:47-57. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    7. Štvrtinová V, Ferenčík M, Hulín I, et al. Cievny endotel ako operátor prenosu informácií medzi kardiovaskulárnym a imunitným systémom. Bratisl lek Listy 1998;99:5-19. Přejít na PubMed...
    8. Culic O, Gruwel ML, Schrader J. Energy turnover of vascular endothelial cells. Am J Physiol, Cell Physiology 1997;273:C205-C213. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    9. Oldendorf WH, Cornford ME, Brown WJ. The Large Apparent Work Capability of the Blood-brain Barrier: a study of the Mitochondrial Content of Capillary Endothelial Cells in Brain and Other Tissues of the Rat. Ann Neurol 1977;1,409-417. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    10. Quintero M, Colombo SL, Godfrey A, Moncada S. Mitochondria as Signaling Organelles in the Vascular Endothelium. Proc Natl Acad Sci USA 2006;103,5379-5384. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    11. Schoors S, Bruning U, Missiaen R, et al. Fatty Acid Carbon Is Essential for dNTP Synthesis in Endothelial Cells. Nature 2015;520,192-197. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    12. Huang H, Vandekeere S, Kalucka J, et al. Role of Glutamine and Interlinked Asparagine Metabolism in Vessel Formation. EMBO J 2017;36:2334-2352. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    13. Li JM, Shah AM. Endothelial cell superoxide generation: regulation and relevance for cardiovascular pathophysiology. Am J Physiol 2004;287:R1014-R1030. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    14. Ding H, Aljofan M, Triggle CR. Oxidative Stress and Increased eNOS and NADPH Oxidase Expression in Mouse Microvessel Endothelial Cells. J Cell Physiol 2007;212:682-689. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    15. Krutzfeldt A, Spahr R, Mertens S, et al. Metabolism of exogenous substrates by coronary endothelial cells in culture. J Mol Cell Cardiol 1990;22:1393-1404. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    16. Mertens S, Noll T, Spahr R, et al. Energetic response of coronary endothelial cells to hypoxia. Am J Physiol 1990;258:H689-H694. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    17. Peters K, Kamp G, Berz A, et al. Changes in Human Endothelial Cell Energy Metabolic Capacities during in vitro Cultivation. The Role of "Aerobic Glycolysis" and Proliferation. Cell Physiol Bioch 2009;24:483-492. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    18. Sweet IR, Gilbert M, Maloney E, et al. Endothelial inflammation induced by excess glucose is associated with cytosolic glucose-6-phosphate but not increased mitochondrial respiration. Diabetologia 2009;52:921-931. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    19. Cantelmo AR, Brajic A, Carmeliet P. Endothelial Metabolism Driving Angiogenesis: Emerging Concepts and Principles. Cancer J 2015;21:244-249. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    20. Carrera-Rotllan J, Estrada-Garcia L. Age-dependent changes and interrelations of number of cells and biochemical parameters (glucose, triglycerides, TBARS, calcium, phosphorus) in cultured human vein endothelial cells. Mech Ageing Dev 1998;103:13-26. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    21. Mann GE, Yudilevich DL, Sobrevia L. Regulation of Amino Acid and Glucose Transporters in Endothelial and Smooth Muscle Cells. Physiol Rev 2003;83:183-252. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    22. Lee WJ, Peterson DR, Sukowski EJ, et al. Glucose transport by isolated plasma membranes of the bovine blood-brain barrier. Am J Physiol Cell Physiol 1997;272:C1552-C1557. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    23. Simpson IA, Vannucci SJ, Dejoseph MR, et al. Glucose transporter asymmetries in the bovine blood-brain barrier. J Biol Chem 2001;276:12725-12729. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    24. Simmons RA, Flozak AS, Ogata ES. Glucose regulates GLUT-1 function and expression in fetal rat lung and muscle in vitro. Endocrinology 1993;132:2312-2318. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    25. Betz AL, Goldstein GW. Transport of hexoses, potassium and neutra lamino acids into capillaries isolated from bovine retina. Exp Eye Res 1980;30:593-605. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    26. Hutchinson ET, Eisenberg HM, Haber B. High-affinity transport ofglutamate in rat brain microvessels. Exp Neurol 1985;87:260-269. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    27. Hughes CCW, Lantos PL. Uptake of leucine and alanine by 299 cultured cerebral capillary endothelial cells. Brain Res 1989;480:126-132. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    28. Lee WJ, Hawkins RA, Peterson DR, et al. Role of oxoproline in the regulation of neutra lamino acid transport across the blood-brain barrier. J Biol Chem 1996;271:19129-19133. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    29. Sanchez del Pino MM, Hawkins RA, Peterson DR. Neutra lamino acid transport by the blood-brain barrier: membrane vesicle studies. J Biol Chem 1992;267:25951-25957. Přejít k původnímu zdroji...
    30. Franchi-Gazzola R, Visigalli R, Bussolati O, et al. Adaptive increase of amino acid transport system requires ERK1/2 activation. J Biol Chem 1999;274:28922-28928. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    31. Patella, F, Schug ZT, Persi E, et al. Proteomics-based Metabolic Modeling Reveals that Fatty Acid Oxidation (FAO) Controls Endothelial Cell (EC) Permeability. Mol Cell Proteomics 2015;14:621-634. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    32. Glatzel DK, Koeberle A, Pein H, et al. Acetyl-CoA Carboxylase 1 Regulates Endothelial Cell Migration by Shifting the Phospholipid Composition. J Lipid Res 2018;59:298-311. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    33. Wei X, Schneider JG, Shenouda SM, et al. De Novo Lipogenesis Maintains Vascular Homeostasis through Endothelial Nitric-oxide Synthase (eNOS) Palmitoylation. J Biol Chem 2011;286:2933-2945. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    34. Loike JD, Cao L, Brett J, et al. Hypoxia induces glucose transporter expression in endothelial cells. Am J Physiol Cell Physiol 1992;263:C326-C333. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    35. Dagher Z, Ruderman N, Tornheim K, et al. Acute Regulation of Fatty Acis Oxidation and AMP-Activated Protein Kinase in Human Umblical Vein Endothelial Cells. Circ Res 2001;88:1276-1282. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    36. Culic O, Decking UKM, Schrader J. Metabolic adaptation of endothelial cells to substrate deprivation. Am J Physiol Cell Physiol 1999;276:C1061-C1068. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    37. Ruderman N. B., Cacicedo J. M., Itani S., et al. Malonyl-CoA and AMP-activated protein kinase (AMPK): possible links between insulin resistance in muscle and early endothelial cell damage in diabetes. Biochem Soc Trans 2003;31:202-206. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    38. Artwohl M. Brunmair B, Fürnsinn C, et al. Insulin does not regulate glucose transport and metabolism in human endothelium. Eur J Clin Invest 2007;37:643-650. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    39. Decking UKM, Alves Ch, Wallimann T, et al. Functional aspocts of creatine kinase isoenzymes in endothelial cells. Am J Physiol Cell Physiol 2001;281:C320-C328. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    40. Hsu CS, Chou SY, Liang SJ, et al. Effect of physiolofic levels of glutamine on ICAM-1 expression in endothelial cells activated by preeclamptic plasma. J Reprod Med 2006;51:193-198. Přejít na PubMed...
    41. Yuan W, Zhang J, Li S, et al. Amine Metabolomics of Hyperglycemic Endothelial Cells Using Capillary LC-MS with Isobaric Tagging. J Proteome Res 2011;10:5242-5250. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    42. Watanabe H, Kuhne W, Spahr R, et al. Macromolecule permeability of coronary and aortic endothelial monolayers under energy depletion. Am J Physiol 1991;260(4 pt 2):H1344-H1352. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    43. Fan Y, Wu DZ, Gong YQ, et al. Effects of calycosin on the impairment of barrier function induced by hypoxia in human umbilical vein endothelial cells. Eur J Pharmacol 2003;481:33-40. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    44. Bierhansl L, Conradi L-C, Treps L, et al. Central Role of Metabolism in Endothelial Cell Function and Vascular Disease. Physiology 2017;32:126-140. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...
    45. Manalo DJ, Rowan A, Lavoie T, et al. Transcriptional Regulation of Vascular Endothelial Cell Responses to Hypoxia by HIF-1. Blood 2005;105:659-669. Přejít k původnímu zdroji... Přejít na PubMed...

    Tento článek je publikován v režimu tzv. otevřeného přístupu k vědeckým informacím (Open Access), který je distribuován pod licencí Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License (CC BY-NC 4.0), která umožňuje nekomerční distribuci, reprodukci a změny, pokud je původní dílo řádně ocitováno. Není povolena distribuce, reprodukce nebo změna, která není v souladu s podmínkami této licence.


    Zpět na obsah


    Cor et Vasa

    Vstupujete na stránky určené zdravotnickým odborníkům, a nikoli laické veřejnosti. Stránky mohou obsahovat také informace, které jsou určeny pouze osobám oprávněným předepisovat a vydávat humánní léčivé přípravky.

    Potvrzuji proto, že jsem zdravotnickým odborníkem ve smyslu zákona č. 40/1995 Sb. ve znění pozdějších předpisů a že jsem se seznámil(a) s definicí zdravotnického odborníka.


    Ne
    Ano